CRISPR

Los tomates que cultivamos hoy en día son el resultado de miles de años de mejoramiento genético convencional. Un estudio reciente realizado por genetistas confirma que las mutaciones vinculadas a rasgos apreciados han producido plantas indeseables cuando se combinan. Los investigadores identificaron mutaciones para después, a través de técnicas de CRISPR, diseñar pantas más productivas, un enfoque se puede aplicar a la mejora de cultivos no sólo en el tomate. En la década de 1950, los investigadores encontraron un nuevo rasgo en un tomate silvestre relativo creciendo en las Islas Galápagos: carecía de la parte gruesa de la articulación o “joint” entre el tallo central y los frutos. Las articulaciones son regiones débiles del tallo que permiten que la fruta

La tecnología de edición de genes CRISPR ha sido popularmente utilizada junto con Cas9, una proteína que funciona como herramienta de corte. Una aplicación vital en el mundo agrario pero que puede ser incluso más precisa en el ser humano si es usada con la proteína CPf1. Las últimas investigaciones están demostrando que esta proteína muestra una mayor precisión en la edición de células humanas debido a su menor tamaño y simplicidad. Científicos de la Universidad de Texas (Estados Unidos) han informado de que CRISPR-Cpf1 puede usarse para corregir mutaciones asociadas con la distrofia muscular de Duchenne, una enfermedad que conduce a la degeneración muscular. Utilizaron el CRISPR-Cpf1 en células del músculo cardíaco humano, consiguiendo con éxito evitar el progreso

Se pueden usar plantas o células de plantas para producir glicoproteínas farmacológicas tales como anticuerpos o vacunas. Sin embargo, estas proteínas transportan N-glicanos con residuos típicos de plantas, que afectan en gran medida el efecto o la actividad de la proteína. Dos enzimas son responsables de la adición de glicanos específicos de la planta: β (1,2) -xilosiltransferasa (XilT) y α (1,3) -fucosiltransferasa (FucT). Un equipo de investigadores de la Universidad Católica de Lovaina (Bélgica) intentó eliminar dos genes XylT y cuatro genes FucT en células de suspensión Nicotiana tabacum BY-2 utilizando CRISPR/Cas9. Se diseñaron tres sgRNAs XylT y seis FucT para dirigir regiones conservadas. Después de la transformación de Nicotiana tabacum BY-2 se obtuvieron líneas de genoma editado y se

Investigadores de la Universidad de Arkansas (Estados Unidos) han utilizaron el sistema CRISPR/Cas9 para la escisión de genes marcadores del genoma de las plantas y poder desarrollar variedades transgénicas libres de marcadores. La investigación se ha centrado en una línea de arroz transgénico que expresaba el gen de la β-glucuronidasa (GUS), que se transformó mediante Agrobacterium o pistola de genes con una construcción que expresaba Cas9 y dos ARN guía para dirigirse a cada extremo del gen GUS. El análisis de las líneas transformadas detectó la escisión a baja frecuencia en las líneas de callo. Sin embargo, se detectó una frecuencia de escisión significativamente mayor en las líneas de las plantas, lo que indica la eficacia de Cas9:gRNA en plantas

El sistema CRISPR es una poderosa herramienta de edición genómica y ​​sus aplicaciones se han desarrollado rápido en los últimos años. Un equipo de investigadores de la Universidad de Nebrsaka (Estados Unidos) han usado esta herramienta para dirigir el gen FAD2 de la semilla de la planta de la Camelina Sativa, una oleaginosa perteneciente a la familia Brassicacea. El objetivo de la investigación es mejorar la composición del aceite de la semilla. En la Camelina allohexaploide, los investigadores diseñaron ARN guías para que se dirigieran simultáneamente a los tres genes FAD2. El equipo obtuvo con éxito las semillas de Camelina con un mayor contenido de ácido oleico en la composición de ácidos grasos. Estos aumentos se asociaron a disminuciones significativas